这篇文章不会讲复杂公式,也不会默认你懂专业术语。我只做一件事:教你拿到一张流式图时,知道该先看什么、再看什么,以及怎么判断它是不是靠谱。
在真正学会看图之前,你需要先换一个理解方式。简单说,流式细胞术就是让流式细胞仪快速给单个细胞拍“证件照”,然后根据这些“照片”把细胞分类计数。
更准确地说,它并不是“拍照成像”,而是记录细胞通过激光时产生的散射光和荧光信号。

所以你在散点图上看到的每一个点,其实都代表一个细胞,而这个点落在什么位置,取决于它的信号强度。
这些信号大致可以分成三类:和细胞大小相关的FSC、反映内部复杂度的SSC,以及你通过抗体染上的荧光信号。
需要注意的是:FSC和SSC并不是细胞大小和复杂度的“直接测量值”,而是与这些特征相关的信号,可能受到细胞形态、折射率等因素影响。
理解了这一点,你再看流式图时,就不会把它当成“图片”,而是会意识到:这是一堆细胞的数据分布。
很多人看不懂流式图,不是因为知识不够,而是因为没有顺序。一张图拿到手,如果上来就盯着荧光看,基本都会迷路。
更有效的方法,是固定按照一个路径去看:先看细胞大致分布,再看标记信息,最后才看比例。这三步如果顺了,流式图会突然变得“很好读”。
第一眼应该找的是FSC和SSC构成的散点图。这一步的重点不在于“准确区分细胞类型”,而在于判断整体状态。你需要观察的是:这些散点有没有自然分成几群,分布是不是清晰,有没有一大片挤在低FSC区域的“碎片”。
如果分群很模糊,或者碎片很多,并不意味着数据完全不可用,但说明后续分析需要更加谨慎,并依赖更严格的门控策略。
很多新手的问题就出在这里,会跳过这一步,直接去看荧光,结果把一堆碎片和死细胞也一起算进去了。
在实际分析中,这一步之后通常还需要进一步进行“单细胞筛选(doublet discrimination)”和“死细胞排除(viability gating)”,否则后续结果可能出现偏差。

当你确认分群没问题之后,才轮到看荧光信号。但这里最容易被误解的一点是,荧光信号并不是简单地“亮或不亮”。真正有意义的是,它有没有超过一个被定义好的“阳性阈值”。
这个阈值不是随便看的,而是通过对照来确定的。如果没有对照,很多看起来“有点亮”的细胞,其实只是背景。
刚才讲的都是散点图(两个荧光或FSC/SSC构成的点图)。但荧光信号还有一种更简单的展示方式——单参数直方图。(如下图所示)

直方图怎么看?
直方图有什么用?
很多人看到图上标着百分比,就会直接解读,比如“某类细胞占30%”。但如果不清楚这个30%是怎么来的,这个数字其实没有太大意义。一个比例始终是基于某个“父群”计算出来的,而不是整个样本。
说了这么多,不如直接拿一张真实的流式结果图来拆解。
下面这张图来自某个人外周血样本的免疫细胞分析,我们一张一张看(具体分析内容在图片后边,你可以试着自行解析一下)。

图A:先看细胞分群对不对
图A是一张FSC/SSC散点图。横坐标是FSC(细胞大小),纵坐标是SSC(内部复杂度)。图上圈出了三群细胞:
这张图说明整体分群比较清晰,至少从FSC/SSC来看,没有明显的碎片干扰。
图B:从淋巴细胞里找出T细胞,并继续往下细分
在淋巴细胞门的基础上,先用CD3把B细胞(CD3-)和T细胞(CD3+)圈出来,再通过CD4进一步区分辅助性T细胞(CD3+CD4+)和细胞毒性T细胞(CD3+CD4-)。
图C:NK细胞与NKT细胞分群及功能亚型分析
这一步不是在看T细胞,而是换了一条线,从淋巴细胞里去找NK细胞。通过CD3和CD56可以分出两群:CD3-CD56+的是NK细胞,CD3+CD56+的是NKT细胞。
在NK细胞基础上,还可以再往下分:根据CD56和CD16,把它们分成偏杀伤型(CD56dim CD16+)和偏分泌型(CD56bright CD16+/-)两类。
图D:单核细胞亚型分析
在单核细胞门内,用CD14和CD16进一步分群:经典单核细胞(CD14++CD16-)、中间型(CD14++CD16+)、非经典(CD14-CD16+),这已经属于更精细的分析层级。
如果你把整个过程连起来看,你会发现,这张图其实不是一步做到位的,而是每一步只解决一个问题:先找细胞,再分类型,再看功能。只要顺着这个逻辑走,图就不会乱。
流式真正难的,不是记住多少参数,而是建立一套稳定的阅读逻辑。
当你拿到一张图时,如果能够自然地按照:FSC/SSC → 单细胞 → 活细胞 → 荧光分群 → 比例解读 的顺序去分析,大部分图其实都能被拆解清楚。剩下的,只是经验的积累。
流式真正难的,不是记住多少参数,而是建立一套稳定的阅读逻辑。
当你拿到一张图时,如果能够自然地按照:FSC/SSC、单细胞、活细胞、荧光分群、比例解读的顺序去分析,大部分图其实都能被拆解清楚。剩下的,只是经验的积累。
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